产品货号:
LA10305
中文名称:
EdU-Alexa Fluor 555细胞增殖检测试剂盒(适用于FACS、FM)
英文名称:
EdU Cell Proliferation Kit with Alexa Fluor 555(suitable for FACS、FM)
产品规格:
50-500T
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本产品是一种利用核苷渗入法对细胞增殖情况进行快速、简单、高灵敏检测的试剂盒。结果可以用荧光显微镜、激光共聚焦显微镜、流式细胞仪或荧光酶标仪进行检测,也可以用于高内涵筛选(HCS)。
本试剂盒适用于培养的细胞或组织样品,也适用于组织切片,可以检测到细胞或组织样本中的单个增殖细胞,也可以对细胞或组织样本总体的细胞增殖情况进行定量分析。本试剂盒包含EdU法检测所需要的所有组份,同时提供了蓝色细胞核染料Hoechst 33342,可以用来复染所有细胞核,也可用于细胞周期分析。
试剂盒中的EdU(5-ethynyl-2' -deoxyuridine)是一种胸苷(T)类似物,EdU可以在在细胞周期的S期中替代胸苷掺入到新合成的DNA中;另一方面,EdU上的乙炔基能与叠氮化物(如荧光探针Alexa Fluor 555 Azide)通过Cu+的催化发生共价反应,形成稳定的三唑环,该反应非常迅速,被称作点击反应(Click reaction) (图1)。通过点击反应,新合成的DNA会被红色荧光标记,然后通过检测荧光信号实现细胞增殖的检测。
图1.EdU法中的点击反应原理图。掺入到细胞DNA中的EdU与荧光探针或生物素等标记的叠氮化物,在铜离子的催化下发生共价反应,形成稳定的三唑环,使细胞DNA标记上荧光探针或生物素。
细胞增殖检测是评估细胞活性、遗传毒性及抗肿瘤药物效果等的基础实验手段。细胞增殖检测的方法按照原理通常可以分为五类:膜损伤检测、代谢活性检测、ATP水平测定、DNA合成检测和细胞荧光标记检测法。目前公认的最精确的检测细胞增殖的方法是直接检测细胞中DNA的合成,即核苷渗入法。以前常用的核苷渗入法是BrdU(胸腺嘧啶核苷酸类似物)法,但BrdU法的缺点是需要变性DNA后才能与抗体结合,导致了DNA双链结构的破坏,影响了其他染料的结合染色,导致染色弥散,准确性降低等问题。
555-Azide:红色荧光,Ex/Em=555/567nm;
Hoechst 33342:蓝色荧光,Ex/Em=346/460nm,bound to DNA。
EdU法作为新型的核苷渗入法具有以下优点:
- 安全:不使用[3H]thymidine,无放射性污染。
- 简单:基于小分子化学反应的检测方法,简单高效,仅需三步:EdU孵育;细胞固定;荧光检测。无需DNA变性和孵育抗体。
- 快速:无需过夜,省却抗原抗体反应。整个检测过程只需2.5小时,大大缩短实验周期。
- 准确:标记率高且无需DNA变性(酸解、热解、酶解等),可有效避免变性带来的样品损伤,确保细胞核边缘清晰完。
- 灵敏:无需抗体,检测染料仅为BrdU抗体的1/500,更容易扩散,即使单个增殖细胞也能准确检测。
- 兼容:对样品几乎无损伤,允许与多种抗体或荧光蛋白同时标记,能够同时检测细胞其他性状特征。
组分 | 规格 |
EdU(10mM) | 200μL |
555-Azide | 55μL |
Click-iT Reaction Buffer | 30mL |
CuSO4 | 1.1mL |
Click-iT Additive | 2管 |
Hoechst 33342(1000X) | 50μL |
说明书 | 1份 |
保存:-20℃,避光,有效期1年。
针对6孔板培养的细胞(每孔500μL的Click反应液),本试剂盒可以提供50个孔反应的量;针对96孔板培养的细胞(每孔50μL的Click反应液),本试剂盒可以提供500个孔反应的量(不同容器细胞Click反应液的具体用量可参考表1);针对每管细胞数量为10~100万的流式细胞仪检测(每管500μL的Click反应液),本试剂盒可以提供50管反应的量;针对冰冻或石蜡切片的检测(每个样品100~200μL的Click反应液),本试剂盒可以提供125~250个样品反应的量。
- 悬浮细胞流式检测:
图1.检测Jurkat细胞增殖的流式结果图。Jurkat细胞只用EdU标记(左列),或在标记EdU前30min用10mM的DNA合成抑制剂羟基脲(Hydroxyurea)处理(右列),2小时后染色,然后通过流式细胞仪进行检测。从流式结果图中可以看出,仅EdU标记的细胞有较高比例的红色荧光阳性细胞,呈现红色荧光阴性(弱染色)和阳性(强染色)的两个峰,分别对应于未增殖细胞和增殖细胞。经过Hydroxyurea处理的细胞,红色荧光阳性的细胞几乎完全消失,仅剩下一个红色荧光阴性的峰。 - 贴壁细胞荧光显微镜检测:
图2.检测CHO-K1细胞增殖的荧光显微镜图CHO-K1细胞只用EdU标记(左列),或在标记EdU前30min用10mM的DNA合成抑制剂羟基脲(Hydroxyurea)处理(右列),2小时后染色(步骤最后染Hoechst,方便观察增殖细胞比例),然后通过荧光显微镜进行检测。镜下可见,仅EdU标记的细胞有一部分染上红色荧光的增殖细胞,未增殖细胞的细胞核呈蓝色单染,增殖细胞的细胞核呈红色和蓝色双染;经过Hydroxyurea处理的细胞,几乎没有呈红色荧光的增殖细胞,绝大多数细胞核仅呈蓝色。
- 羟基脲(Hydroxyurea,货号:LA14601)为DNA合成抑制剂,经过10mM羟基脲提前30min处理的细胞,红色荧光阳性的细胞几乎完全消失,因此常被用作EdU实验的阴性对照。
- 配制好的Click-iT Additive Solution请根据每次用量适当分装后-20℃保存,避免反复冻融。Click-iT Additive Solution融化后有白色物质析出为正常现象,请上下颠倒几次,待全部溶解后使用。溶液一旦呈现棕色,则说明有效成分降解,不能再使用。
- 皂苷促渗液可以用于全血及含红细胞的细胞悬液,以及其他含多种细胞类型的混合细胞悬液的通透。这种促渗液可以在裂解红细胞的同时,维持白细胞的光散射特性。
- 本试剂盒做动物实验时可能需要更多的EdU(货号:LA13603),请根据实验需求用合适稀释液稀释后使用。
- 由于本产品涉及到铜离子催化进行点击反应,请注意以下的兼容性问题及解决方案。本产品完全兼容有机类染料如Alexa Fluor系列普通染料及FITC、Allophycocyanin (APC)及APCE串联染料;对于Qdot纳米晶体探针、HRP、R-PE和R-PE串联染料如Alexa Fluor 680-R-PE等,需要在点击反应完成后进行反应和检测;本产品会影响GFP、RFP、mCherry等荧光蛋白的荧光,对于荧光类蛋白如GFP、TC-FlAsH和TC-ReAsH类试剂,需要在点击反应前进行反应和检测。Phalloidin (鬼笔环肽)不兼容点击反应,在检测细胞微管时请选用其它探针。
- 如需在传统流式仪上进行总DNA含量的检测,可采取低流速检测。DNA含量检测所用荧光检测信号应与DNA含量成线性关系。EdU标记信号呈现对数放大可以很好的被检测到。
- 为了您的安全和健康,操作时请穿着实验服并佩戴一次性手套。
- 需自备试剂
- 检测体系的确定
- 以下操作步骤是以6孔板或常规切片检测体系为例的,如果使用其他容器,检测体系可以相应按比例调整,具体检测时Click反应液的使用量请参考表1。
- 以下操作步骤是以贴壁细胞或组织切片为例的,如果检测的是悬浮细胞,请按常规的悬浮细胞的操作方式进行,比如在相关步骤中增加离心步骤等。细胞数在10~100万的悬浮细胞可以使用500μL的检测体系,可以根据细胞数的多少相应调整检测体系。
表1.Click反应液的使用量参考细胞接种容器 384孔板 96孔板 48孔板 24孔板 12孔板 6孔板 5.5cm皿 Click反应液体积 20μL 50μL 70μL 100μL 200μL 500μL 1mL
- 以下操作步骤是以6孔板或常规切片检测体系为例的,如果使用其他容器,检测体系可以相应按比例调整,具体检测时Click反应液的使用量请参考表1。
- EdU标记与固定、通透
- 对于培养细胞
- 将适当数量的待测细胞接种于6孔板中,培养过夜至恢复正常状态后,进行所需要的
药物处理或者其它刺激处理。 - 配制2XEdU工作液:用完全培养基稀释EdU(10mM)至合适的浓度,配成2X的EdU工作液。例如,推荐的EdU工作液(1X)的终浓度为10μM,那么需要用完全培养液1:500稀释EdU(10mM)至浓度为20μM,即配成2XEdU工作液(20μM)。
注:EdU的使用浓度应根据所使用的的细胞类型做相应的优化,推荐用户以10μM的EdU初始浓度进行摸索优化,一般的贴壁肿瘤细胞使用10μM就可以。细胞培养基种类、细胞类型、细胞生长密度和增殖速度等多方面因素都有可能影响EdU的掺入效果,因此建议用户在预实验中设置一系列的EdU浓度梯度,以确定最佳浓度。如果之前使用过BrdU进行实验,则可以参考BrdU的终浓度作为EdU的终浓度。您也可以参考附表1.细胞实验EdU孵育浓度及时间参考。 - 37℃预热2X EdU工作液,等体积加入6孔板中,使6孔板中的EdU终浓度变为1X。例如如果终浓度为10μM,6孔板中每孔原来有培养基1mL,则将1mL 2X EdU工作液(20μM)加入到每孔中。如果培养基原有体积过大,可以先吸除适量的培养基,再加入与剩下培养基等体积的2XEdU工作液;或者可以增加EdU的浓度并减少工作液的体积,例如2mL培养液中加入220μL 10X EdU工作液(100μM)。
注:更换所有的培养液可能会对细胞的增殖有影响,因此不建议更换所有的培养液。 - 继续孵育细胞适当时间。该孵育时间的长短取决于细胞生长速率,通常宜继续孵育细胞周期10%左右的时间。您也可以参考附表2.常见细胞系EdU孵育时间参考。
注:孵育时间小于45min时,建议提高EdU的浓度;孵育时间大于20h时,建议适当降低EdU的浓度。 - EdU标记完成后,去除培养基。
注:若最后做流式检测,样本为贴壁细胞,则用胰酶将细胞消化下来,收集细胞,之后每一步去除液体的步骤都需要500~1000×g离心3~5min。 - 加入1mL固定液,室温固定15~30min。
- 去除固定液,以每孔1mL的洗涤液洗涤细胞3次,每次3~5min。
- 去除洗涤液,加入1mL通透液,室温孵育10~15min。
- 去除通透液,以每孔1mL的洗涤液洗涤细胞1~2次,每次3~5min。
- 转步骤4。
- 将适当数量的待测细胞接种于6孔板中,培养过夜至恢复正常状态后,进行所需要的
- 对于组织切片样本
可以通过注射或进食等方式进行动物体内的EdU标记。以下是以小鼠为例的,其它动物体内EdU标记条件请参考相关文献,也可以参考附表3进行条件优化。- 用PBS配制成一定浓度的EdU,对于小鼠,可按照10~200mg/kg的用量进行腹腔注射、特定组织或器官局部注射或者加入饮用水。
注:EdU具体用量与动物的种类、体重和使用方式有关,可以参考相关文献,因此建议用户在预实验中设置一系列的EdU浓度梯度,以确定最佳浓度。推荐用户以50mg/kg的EdU初始浓度进行摸索优化。如果之前使用过BrdU进行实验,则可以参考BrdU的终浓度作为EdU的终浓度。或者直接使用50mg/kg的浓度进行测试。也可以参考附表2。 - EdU标记4小时后或根据特定实验确定的适当时间后,快速处死小鼠,取出所需组织,按照常规步骤制作冰冻切片或石蜡切片。EdU标记的时间也根据相关参考文献自行调整。
- 对于冰冻切片:
① 加入适量固定液,室温固定15min。
② 去除固定液,用适量洗涤液洗涤3次,每次3~5min。
③ 去除洗涤液,加入适量通透液,室温孵育10~15min。
④ 去除通透液,用适量洗涤液洗涤1~2次,每次3~5min。
⑤ 抗原修复(选做):如果同时需要进行目的蛋白的免疫荧光染色,并有必要进行抗原修复,可以使用适当的抗原修复液进行抗原修复处理。
⑥ 转步骤4。 - 对于石蜡切片:
① 脱蜡:二甲苯中脱蜡5~10min。换用新鲜的二甲苯,再脱蜡5~10min。无水乙醇5min,换新的无水乙醇3min。95%乙醇3min。85%乙醇3min。75%乙醇3min。50%乙醇3min。PBS 5min。
② 抗原修复(选做):如果同时需要进行目的蛋白的免疫组化染色,可以使用适当的抗原修复液进行抗原修复处理。
注:如果使用蛋白酶K或胰酶进行抗原修复,修复后须反复洗涤干净,避免残留的酶干扰后续标记反应。
③ 转步骤4。
- 用PBS配制成一定浓度的EdU,对于小鼠,可按照10~200mg/kg的用量进行腹腔注射、特定组织或器官局部注射或者加入饮用水。
- 对于培养细胞
- EdU检测
注:本参考步骤每个样品的反应体系为500μL的Click反应液。用户可根据自己的样本情况参考表1适当调整。对于切片,可以根据切片大小,每个切片使用100~200μL的Click反应液,其余步骤相同。- 配制Click-iT Additive Solution:用1.3mL去离子水/管溶解Click-iT Additive。混匀至全部溶解,即为Click-iT Additive Solution。配制后请按照每次用量适当分装,并-20℃保存,溶液一旦呈现棕色,则说明有效成分降解不能再用。
- 请参考下表配制Click反应液。
注:请严格按照下表中组分顺序和体积配制Click反应液,否则Click反应可能无法有效进行。Click反应液须在配制后15分钟内使用。组分 以6孔板为例的样品数 1 2 5 10 50 Click-iT Reaction Buffer 430μL 860μL 2.15mL 4.3mL 21.5mL CuSO4 20μL 40μL 100μL 200μL 1mL 555-Azide 1μL 2μL 5μL 10μL 50μL Click-iT Additive Solution 50μL 100μL 250μL 500μL 2.5mL 总体积 500μL 1mL 2.5mL 5mL 25mL - 去除上一步骤中的洗涤液。每孔加入500μL Click反应液,轻轻摇晃培养板以确保
Click反应液可以均匀覆盖样品。 - 室温避光孵育30min。
- 吸除Click反应液,以每孔1mL的洗涤液洗涤细胞3次,每次3~5min。
- 此时增殖细胞被标记了明亮的红色荧光。如无其它特殊要求,即可在荧光显微镜下观察,或者使用流式细胞仪(用500μL洗涤液重悬细胞后上机)、多功能酶标仪、高内涵筛选仪器(一般高内涵筛选需要细胞核复染)进行荧光检测分析。555-Azide的最大激发波长是555nm,最大发射波长是567nm。如果需要检测细胞增殖的比例,可以参照步骤5对细胞核进行复染。
- 配制Click-iT Additive Solution:用1.3mL去离子水/管溶解Click-iT Additive。混匀至全部溶解,即为Click-iT Additive Solution。配制后请按照每次用量适当分装,并-20℃保存,溶液一旦呈现棕色,则说明有效成分降解不能再用。
- 细胞核染色
- 1X Hoechst 33342溶液的配制:用PBS按1:1000比例稀释Hoechst 33342(1000X)。
- 吸除步骤4.e洗涤液,每孔加1mL的1X Hoechst 33342溶液,室温避光孵育10min。
- 吸除1X Hoechst 33342溶液,以每孔1mL的洗涤液洗涤细胞3次,每次3~5min。
- 随后即可进行荧光检测。Hoechst 33342为蓝色荧光,最大激发波长为346nm,最大发射波长为460nm。
- 1X Hoechst 33342溶液的配制:用PBS按1:1000比例稀释Hoechst 33342(1000X)。
附表1.细胞实验EdU孵育浓度及时间参考
PubMed ID | Reference | Cell line | Concentration | Time |
18272492 | Salic A,et al.PNAS.2008 | NIH3T3,Hela | 10 nM~10μM | 1h |
18521918 | Cappella P,et al.Cytometry A.2008 | HL-60,A2780,U2OS | 1~10μM | 30min |
18996411 | Chehrehasa F,et al.J Neurosci Methods.2009 | Neurospheres | 1~20μM | 24h |
19179371 | Limsirichaikul S,et al.Nucleic Acids Res.2009 | Human primary fibroblasts | 10μM | 0.5,1,2,4h |
19253396 | Warren M,et al.Dev Dyn.2009 | Chick embryos | 10μM~2mM | 4h |
19647746 | Yu Y,et al.J Immunol Methods.2009 | Spleen cells | 50μM | 24h |
19544417 | Momcilovi?O,et al.Stem Cells.2009 | Human ES cells | 10μM | 30min |
20080700 | Cinquin O,et al.PNAS.2010 | emb-30 | 1μM | 12h |
20025889 | Han W,et al.Life Sci.2009 | VSMC | 50μM | 2h |
20659708 | Huang C,et al.J Genet Genomics.2010 | ESC | 50μM | 2h |
21310713 | Hua H,et al.Nucleic Acids Res.2011 | fission yeast strains | 10μM | 3h |
20824490 | Lv L,et al.Mol Cell Biochem.2011 | EJ cells | 50μM | 4h |
21248284 | Yang S,et al.Biol Reprod.2011 | GC cells | 50μM | 2h |
21227924 | Zhang YW,et al.Nucleic Acids Res.2011 | U2OS,HT29 | 30μM | 90min |
21829621 | Guo T,et al.PloS One.2011 | HIT-T15 | 50μM | 4h |
21980430 | Zeng T,et al.PloS One.2011 | MCF-10A | 25μM | 2h |
22012572 | Ding D,et al.Int Orthop.2011 | C3H10T1/2 | 10μM | 24h |
22000787 | Zeng W,et al.Biomaterials.2011 | EPC | 50μM | 4h |
21913215 | Xue Z,et al.J Cell Biochem.2011 | SGC7901 | 25μM | 24h |
22016038 | Peng F,et al.Lasers Med Sci.2011 | MSC | 50μM | 2h |
21878637 | Li D,et al.J Biol Chem.2011 | HCC | 50μM | 2h |
附表2.常见细胞系EdU孵育时间参考
细胞系 | 人胚胎细胞 | 酵母细胞 | 小鼠胚胎成纤维细胞 NIH/3T3 | 人宫颈癌细胞 Hela | 人胚肾细胞系 HEK293 | 人神经细胞 |
细胞周期 | ~30min | ~3h | ~18h | ~21h | ~25h | ~5d |
孵育时间 | 5min | 20min | 2h | 2h | 2h | 1d |
附表3.动物实验EdU标记时间及剂量参考
PubMed ID Reference Species | Method | Amount | Time | Tissue |
18272492 Salic A,et al.PNAS.2008 Mice | 腹腔注射 | 100μg | 96h | 脑 |
19554638 Kaiser CL,et al.Laryngoscope.2009 Chicken | 皮下注射 | 50mg/kg | 72h | 耳蜗 |
19494148 Guo F,et al.J Neurosci.2009 Mice | 腹腔注射 | 100mg/kg | 3h | 脑 |
19179611 Veres.TZ,et al.Am J Pathol.2009 Mice | 腹腔注射 | 50mg/kg | 3h/20h | - |
20664699 Wiley LA,et al.Mol Vis.2010 Mice | 腹腔注射 | 100~200μg | 1h | 眼 |
20163731 Schmidt EJ,et al.BMC Dev Biol.2010 Mice | 腹腔注射 | 200μg | 30min | 胚胎 |
20064490 Zeng C,et al.Brain Res.2010 Mice | 腹腔注射 | 50mg/kg | 4h~30d | 脑 |
20038597 Janas ML,et al.J Exp Med.2010 Mice | 腹腔注射 | 100μg | 4h | 胸腺 |
21145612 Sun H,et al.J Hepatol.2011 Mice | 腹腔注射 | 100μg | 72h | - |
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